Biophysical and biochemical characterization of RhPDEs of Choanoeca flexa for optogenetic application

Die Proteine CfRhPDE1-4 aus Choanoeca flexa wurden in Xenopus laevis Oozyten exprimiert und auf lichtabhängige PDE-Aktivität als Homodimere untersucht, was nur CfRhPDE1 aufwies. Seine Rhodopsindomäne wurde in Pichia pastoris exprimiert und tag-aufgereinigt. Es wurde ein Absorptionsmaximum bei 492 nm im Dunkeln und ein lichtadaptiertes Photoprodukt bei 390 nm detektiert, welches thermisch mit t = 3,4 s zurückkehrte. Flash-Photolyse wies einen Photozyklus mit kurzlebigem K-Intermediat (t = 134 ns), K/L-like Intermediat (t = 899 µs) und M-state (t = 3,4 s) nach. Die Rekonversion war temperaturabhängig (Ea = 57,3 kJ/mol) und langsamer bei hohem pH, was einen CfRh1 Photozyklus mit deprotoniertem M-state nahelegt. Fluoreszenz-markiertes CfRhPDE1 wurde in aufgereinigten Membranfraktionen aus X.laevis Oozyten, ND7/23 Zellen und HEK293T Zellen charakterisiert. In ND7/23 Membranen verringerte Belichtung den cGMP Km von 4,4 µM auf 1,9 µM und erhöhte den kcat von 2,0 /s auf 4,7 /s. CfRhPDE1 wies eine 500-fach erhöhte Selektivität für cGMP gegenüber cAMP auf. Km und kcat hingen vom Expressionssystem ab. CfRhPDE1 wurde mit einer mutierten Rhodopsin-Guanylylzyklase mit verschobenem Aktionsspektrum kombiniert, was zweifarbige, bidirektionale optogenetische Kontrolle von CNG-Kanälen auf einer Subsekunden-Zeitskala ermöglichte. Dies widerlegt frühere Annahmen verzögerter funktioneller Kopplung in RhPDEs und zeigt, dass RhPDEs optische Stimuli schnell umsetzen können. Ein hochaffiner, rauscharmer CNG-Kanal erwies sich am besten für stufenartiges Photoswitching und die Untersuchung der RhPDE Kinetik. Nach Entfernung des zytosolischen N-Terminus blieb eine Rest-Lichtschaltbarkeit von CfRhPDE1 erhalten. Volllängen-CfRhPDE1 wurde in P.pastoris exprimiert und aufgereinigt. Analytische SEC zeigte eine Reihe verschiedener Spezies mit unbekanntem Oligomerzustand und geringer Ausbeute. Chromatographie und crosslinking/western blotting legen eine dimere PDE-Domäne und dimeres CfRhPDE1 nahe.

Authors

Publication Details

Journal
edoc Publication server (Humboldt University of Berlin)
Published
2026-02-11
DOI
https://doi.org/10.18452/36291
Primary Topic
Photoreceptor and optogenetics research
Type
article
Field-Weighted Citation Impact
0.00
Controls
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article

Biophysical and biochemical characterization of RhPDEs of Choanoeca flexa for optogenetic application

Nicolas Tê Hu Liem
edoc Publication server (Humboldt University of Berlin)
Photoreceptor and optogenetics research
article

Biophysical and biochemical characterization of RhPDEs of Choanoeca flexa for optogenetic application

Nicolas Tê Hu Liem
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Abstract

Die Proteine CfRhPDE1-4 aus Choanoeca flexa wurden in Xenopus laevis Oozyten exprimiert und auf lichtabhängige PDE-Aktivität als Homodimere untersucht, was nur CfRhPDE1 aufwies. Seine Rhodopsindomäne wurde in Pichia pastoris exprimiert und tag-aufgereinigt. Es wurde ein Absorptionsmaximum bei 492 nm im Dunkeln und ein lichtadaptiertes Photoprodukt bei 390 nm detektiert, welches thermisch mit t = 3,4 s zurückkehrte. Flash-Photolyse wies einen Photozyklus mit kurzlebigem K-Intermediat (t = 134 ns), K/L-like Intermediat (t = 899 µs) und M-state (t = 3,4 s) nach. Die Rekonversion war temperaturabhängig (Ea = 57,3 kJ/mol) und langsamer bei hohem pH, was einen CfRh1 Photozyklus mit deprotoniertem M-state nahelegt. Fluoreszenz-markiertes CfRhPDE1 wurde in aufgereinigten Membranfraktionen aus X.laevis Oozyten, ND7/23 Zellen und HEK293T Zellen charakterisiert. In ND7/23 Membranen verringerte Belichtung den cGMP Km von 4,4 µM auf 1,9 µM und erhöhte den kcat von 2,0 /s auf 4,7 /s. CfRhPDE1 wies eine 500-fach erhöhte Selektivität für cGMP gegenüber cAMP auf. Km und kcat hingen vom Expressionssystem ab. CfRhPDE1 wurde mit einer mutierten Rhodopsin-Guanylylzyklase mit verschobenem Aktionsspektrum kombiniert, was zweifarbige, bidirektionale optogenetische Kontrolle von CNG-Kanälen auf einer Subsekunden-Zeitskala ermöglichte. Dies widerlegt frühere Annahmen verzögerter funktioneller Kopplung in RhPDEs und zeigt, dass RhPDEs optische Stimuli schnell umsetzen können. Ein hochaffiner, rauscharmer CNG-Kanal erwies sich am besten für stufenartiges Photoswitching und die Untersuchung der RhPDE Kinetik. Nach Entfernung des zytosolischen N-Terminus blieb eine Rest-Lichtschaltbarkeit von CfRhPDE1 erhalten. Volllängen-CfRhPDE1 wurde in P.pastoris exprimiert und aufgereinigt. Analytische SEC zeigte eine Reihe verschiedener Spezies mit unbekanntem Oligomerzustand und geringer Ausbeute. Chromatographie und crosslinking/western blotting legen eine dimere PDE-Domäne und dimeres CfRhPDE1 nahe.

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